圆二色谱 CD
表征蛋白二级结构,关键不在于“测一张谱图”,而在于缓冲液透光、浓度与光程匹配、背景扣除、单位换算、拟合算法选择和数据边界判断。二级结构判断主要看远紫外区
190–250 nm 的肽键信号。
1. 测试前:缓冲液和浓度容易踩坑
缓冲液选择
远紫外 CD 对溶剂吸收非常敏感,应优先用磷酸盐、硼酸盐、低浓度 NaF 等低吸收体系。
尽量避免或降低 Tris、咪唑、DTT、甘油、高浓度 NaCl 等成分,它们在 190–200 nm 附近会明显抬高背景。
缓冲液浓度不宜过高,通常控制在低毫摩尔级更利于获得低波长端数据。
样品和空白缓冲液组成必须完全一致,否则背景扣除会引入假峰。
浓度与光程匹配
远紫外二级结构测试常用蛋白浓度约 0.1–0.5 mg/mL,配合 0.01–0.1 cm 短光程石英池。
浓度过高会导致吸光度过大、HT 电压升高、低波长端失真;浓度过低则信噪比差。
测前建议用紫外 280 nm 或 BCA 法准确测定浓度,CD 定量拟合对浓度误差很敏感。
样品需澄清透明,测前离心或过滤,避免颗粒造成光散射。
2. 采谱参数:保证低波长端可用
波长范围:通常 190–260 nm;若能稳定测到 180–185 nm,拟合准确性更好。
扫描速度:50–100 nm/min 较常用。
响应/积分时间:1–2 s/点。
重复扫描 3 次以上取平均,降低随机噪声。
必须同步采集空白缓冲液谱图并扣除。
检查 HT 电压曲线:若 190 nm 附近 HT 超过 600–700 V,说明吸光度过高,应降低浓度或缩短光程。
3. 数据处理:先做标准化,再做拟合
原始数据通常以 mdeg 表示,不能直接用于不同样品比较。需要转换为平均残基摩尔椭圆度 MRE:
[θ] = mdeg × 10⁶ / c × l × N × L
其中 c 为蛋白浓度 mol/L,l 为光程 cm,N 为氨基酸残基数,L
为光程换算相关常数。更稳妥的做法是让软件根据分子量、残基数、浓度和光程自动计算。
二级结构定量常用算法包括 CDPro、CONTIN、SELCON3、CDSSTR、BeStSel、DichroWeb 等。
其中 BeStSel 对 β-折叠多样性更敏感,适合抗体、淀粉样蛋白等 β-结构较多的体系。
拟合时要注意:
输入浓度、分子量、残基数必须准确;
波长范围尽量覆盖到 190 nm 以下;
各组分加和应接近 100%,偏差过大需检查数据质量;
不同算法结果可交叉比对,不要只取单一算法数值。
4. 谱图判读:先看形状,再看比例
典型远紫外特征如下:
α-螺旋:208 nm、222 nm 两个负带,190 nm 附近强正带。
β-折叠:216–218 nm 附近负带,195 nm 附近正带。
无规卷曲:195–200 nm 附近强负带,220 nm 以上信号接近零。
β-转角:贡献较复杂,常与 β-折叠、无规卷曲信号重叠。
判断时建议先看完整谱形是否发生系统性变化,再看拟合比例。若只看到 222 nm
轻微变化,但整体谱形基本重合,不能轻易下结论说“二级结构显著改变”。
5. 常见误判
缓冲液背景未扣净:200–220 nm 被压低,α-螺旋含量被低估。
浓度不准:拟合得到的二级结构比例整体失真。
把拟合比例当精确结构:CD 给出的是溶液平均二级结构估计,不能定位到具体残基。
谱形差仍强行拟合:低波长端噪声大或 HT 过高时,拟合结果不可靠。
远紫外与近紫外混用:远紫外看二级结构,近紫外 250–320 nm 主要反映芳香残基环境和三级结构。
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