EdU(5-乙炔基-2'-脱氧尿苷)检测是目前细胞增殖研究中主流、高效的方法之一。相比传统的BrdU检测,它不需要DNA变性(酸处理或酶消化),操作更简单,且对细胞形态保护更好。
EdU是一种胸苷类似物,能在细胞增殖的S期(DNA合成期)被掺入到新合成的DNA中。通过“点击化学”反应(Click
Chemistry),荧光标记的叠氮化物能特异性地与EdU结合,从而在荧光显微镜或流式细胞仪下被检测到。
操作步骤
1. 细胞接种与处理
接种:取对数生长期的细胞,消化计数后接种到培养板中。
密度建议:96孔板通常接种 2,000~10,000个细胞/孔(约100μL体系),具体视细胞大小和生长速度而定。
贴壁:放入37℃、5% CO₂培养箱中培养过夜,待细胞贴壁并生长至合适密度(通常60%-80%)。
加药处理:根据实验目的,加入药物或刺激因子处理细胞。
2. EdU 标记(关键步骤)
配制工作液:用完全培养基将EdU储备液稀释至 2×工作浓度(通常终浓度为 10 μM)。
注意:EdU浓度和孵育时间需根据细胞类型优化。对于大多数肿瘤细胞,10 μM孵育2小时是标准条件。
加样孵育:
若孔内原有100μL培养基,直接加入100μL的2×EdU工作液,使终浓度为10μM。
放入培养箱继续孵育 2小时。
3. 细胞固定与通透
洗涤:吸去含EdU的培养基,用PBS轻柔洗涤细胞2次,每次3分钟。
固定:每孔加入50-100μL 4%多聚甲醛,室温固定 15-30分钟。
目的:保持细胞形态。
洗涤:吸去固定液,用PBS洗涤3次,每次3-5分钟。
通透:每孔加入100μL 0.5% Triton X-100(溶于PBS),室温孵育 10-20分钟。
目的:增加细胞膜通透性,让点击化学反应试剂进入细胞核。
洗涤:吸去通透液,用PBS洗涤2次。
4. Click 反应(染色)
配制反应液:严格按照试剂盒说明书,依次混合缓冲液、CuSO₄、荧光叠氮化物(如Alexa Fluor 488/555/594
Azide)和添加剂。
注意:反应液需现配现用,且配制后应在15分钟内使用。
孵育:每孔加入50-100μL反应液,确保覆盖细胞。
避光反应:室温避光孵育 30分钟。
5. 核染与观察
洗涤:吸去反应液,用含3% BSA的PBS或普通PBS洗涤3次,去除未反应的染料。
核染:加入Hoechst 33342或DAPI染液,室温避光孵育 5-10分钟。
z终洗涤:PBS洗涤3次。
成像:加入适量PBS或抗荧光淬灭封片剂,立即在荧光显微镜下观察并拍照。
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