在分子生物学研究中,mRNA水平的变化并不总能反映功能执行者的真实状态。要确认一个蛋白是否表达、表达多少、是否发生磷酸化或剪切,细胞蛋白免疫印迹(Western Blot,WB)依然是经典、被期刊认可的手段。它兼具SDS-PAGE的高分辨力与抗原抗体反应的高特异性,被称为蛋白质分析的"金标准"。
什么是细胞蛋白免疫印迹
免疫印迹(immunoblotting)又称蛋白质印迹,由George Stark团队于1979年开发、1981年由Neal
Burnette正式命名,与检测DNA的Southern印迹、检测RNA的Northern印迹并称为分子生物学三大印迹技术。
其核心原理分三步:首先利用SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)使经变性处理的蛋白质按分子量大小分离;接着通过电转印将凝胶中分离的蛋白质转移到硝酸纤维素膜(NC膜)或PVDF膜上固定;z后使用特异性一抗孵育,再用带有HRP酶或荧光标记的二抗结合一抗,通过化学发光、荧光或显色完成信号检测与成像。随着化学发光法的应用,其检测灵敏度可达飞克级别。
能解决哪些研究问题
主要用于目标蛋白质特异性表达的定性或半定量分析、蛋白质-蛋白质或蛋白质-DNA相互作用的后续分析,以及蛋白质修饰的鉴定分析。
具体场景包括:基因敲除/敲低/过表达的效果验证、信号通路关键蛋白及磷酸化水平检测、药物处理后的蛋白表达变化、凋亡与增殖相关标志物分析,以及作为蛋白芯片、蛋白质谱结果的验证实验。
标准实验流程与关键控制点
1.
实验前背景调研(z易被忽略):实验前必须深入了解目的蛋白在待测样本中的表达水平、蛋白大小、时空表达特征及潜在翻译后修饰。可借助HPA(proteinatlas)查询组织与细胞系中的表达定位,PhosphoSite查询修饰类蛋白的表达条件与丰度,BioGPS查询mRNA表达水平,UniProt查询基因名、亚细胞定位及修饰类型。
2.
样本制备:全程低温操作。贴壁细胞在4℃预冷PBS洗涤2~3遍后用细胞刮刀刮下,悬浮细胞离心收集,组织样品用匀浆器或液氮研磨;按1×10⁶细胞加100
μL裂解液,冰上裂解30 min,12000 rpm 4℃离心10
min取上清。裂解液需现用现加蛋白酶抑制剂;检测磷酸化时需额外添加磷酸酶抑制剂,必要时加去乙酰化酶抑制剂。注意PMSF在水溶液中不稳定,通常30分钟内降解一半,若样品处理超过1小时需再次添加。蛋白定量推荐BCA法。
3. SDS-PAGE电泳:分离胶浓度需匹配目标分子量——6%适用于50-150 kDa,8%适用于30-90 kDa,10%适用于20-80
kDa,12%适用于12-60 kDa,15%适用于10-40 kDa;浓缩胶80V电泳20-30分钟,分离胶100-120V电泳至溴酚蓝接近胶底。
4.
转膜:PVDF膜需先在甲醇中浸泡30秒激活,NC膜直接在转膜缓冲液中平衡5分钟;"三明治"组装遵循"黑胶白膜"原则,堆叠顺序为负极-海绵-滤纸-凝胶-膜-滤纸-海绵-正极,务必排除气泡。湿转条件一般为恒流220mA或恒压90V/300mA,时间依分子量调整:<30
kDa约30分钟,30-70 kDa约60-90分钟,70-150 kDa约90-180分钟。
5. 封闭与抗体孵育:用5%脱脂牛奶或1%
BSA室温孵育1-2小时,磷酸化蛋白检测推荐用BSA封闭;一抗推荐4℃过夜,二抗室温孵育1-2小时。
6. 洗膜与显影:TBST/PBST洗涤3次,每次5-10分钟;化学发光底物A/B液1:1现用现配。
六个高频"翻车"点与对策
背景高/斑点:过滤牛奶封闭液或更换无颗粒封闭液。
信号微弱:增加一抗浓度、延长孵育时间或增加上样量。
条带拖尾或弯曲:调整分离胶浓度;检查电压均匀性及凝胶气泡。
条带数量与预期不符:可能是蛋白存在异构体或可变剪切体,也可能是糖基化等翻译后修饰导致表观分子量大于预测值。建议首次实验保留完整膜片检测,避免遗漏信息。
检测不到目标蛋白:若目标蛋白在全细胞裂解液中含量低,建议根据定位提取核蛋白、膜蛋白或线粒体蛋白;分泌型蛋白可加入BFA抑制分泌或检测培养上清;多次跨膜蛋白应避免高温煮样或设置温度梯度预实验。
结果重复性差:注意细胞传代代次的影响——不同代数的癌细胞存在异质性,可能导致基因表达变化,建议使用同一代次细胞。
化学发光法 vs 荧光法
两种检测方式各有侧重。化学发光法(ECL)灵敏度极高,可达皮克至飞克级,但信号持续时间短暂(几小时),不同印迹之间可能存在差异,优点是可对印迹剥离后重新检测。荧光法使用荧光标记二抗,可在同一印迹上同时检测多种靶标,信号可持续数周至数月,不同印迹间重现性高,但需注意避免光谱相近标记物串色。
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