半薄切片(semithin section,厚度通常为0.4~0.5
μm)定位染色是生物电镜样品制备中一个承上启下的关键步骤——它介于树脂包埋与超薄切片之间,利用光学显微镜对半薄切片进行染色观察,精确定位目标区域后,再对同一树脂块进行超薄切片(ultrathin
section,~70 nm)送入电镜观察。这一技术解决了电镜"看哪里"的核心问题,以下从原理、染色方法、操作流程和应用场景四个维度展开。
一、技术原理与核心逻辑
生物电镜样品制备的标准流程为:组织固定→脱水→树脂渗透→包埋聚合→切片→染色→观察。问题在于,树脂包埋块内部的目标结构(如特定细胞层、病变区域、特定组织界面)在包埋后无法直接看到,如果直接切超薄片送电镜,可能切到非目标区域,浪费大量时间和样品。
半薄切片定位染色的核心逻辑是:先用玻璃刀或金刚石组织刀切出0.4~0.5
μm厚的半薄切片,用光学染料染色后在普通光学显微镜(10×~40×)下观察,确认目标结构的位置和取向,然后调整树脂块的切割角度和深度,再用金刚石刀切出~70
nm的超薄切片送TEM或SEM观察。这相当于在"微观手术"前先做一次"光学导航"。
二、常用染色方法与适用场景
半薄切片定位染色根据目标结构和树脂类型的不同,有多种染色方案可供选择。
1. 甲苯胺蓝(Toluidine Blue)/ 碱性品红(Basic Fuchsin)双染法——经典的通用方案
这是生物电镜实验室常用的半薄切片定位染色组合。甲苯胺蓝是一种异染性染料,对核酸(细胞核)和酸性黏多糖有强亲和力,呈蓝色至紫色;碱性品红对细胞质和结缔组织有亲和力,呈粉红色。两者配合使用可清晰区分细胞核、细胞质和细胞外基质。
操作流程为:半薄切片贴附于载玻片上,热板烘干后,先用1%甲苯胺蓝水溶液在热板上染色约10秒,水洗后,再用0.05%碱性品红(溶于1%硼砂溶液)染色约10秒,水洗干燥后在光学显微镜下观察。该方法适用于几乎所有环氧树脂包埋的生物组织,包括脑组织、肌肉、内脏器官等。
2. 钌红(Ruthenium Red)染色——针对阴离子基团和黏液结构
钌红是一种多价阳离子染料,特异性结合组织中的阴离子基团(如糖胺聚糖、唾液酸残基等),常用于肠道杯状细胞黏液、细胞外基质中蛋白聚糖的定位观察。
操作流程为:半薄切片贴于载网或载玻片上,先用钌红水溶液处理,再依次用四氧化锇、醋酸铀和柠檬酸铅进行电子染色。该方法的优势在于可在同一半薄切片上实现光学显微镜和电镜的关联观察(correlative
light and electron microscopy,
CLEM),即先在光镜下确认钌红标记的阳性区域,再对同一位置切超薄片进行电镜观察,实现彩色反应与电子密度的精确对应。
3. 醋酸铀/柠檬酸铅直接染色——适用于SEM观察的半薄切片
Koga等人(2015)开发了一种将半薄切片直接用醋酸铀和柠檬酸铅染色后,用SEM背散射电子(BSE)检测器观察的方法。由于半薄切片贴附在载玻片上(而非TEM铜网上),不受栅格条遮挡,可一次性观察大面积区域,且染色方式与常规TEM超薄切片完全一致,图像衬度与TEM图像高度相似。该方法特别适用于CLEM研究——在同一半薄切片上先做免疫荧光标记,再用BSE-SEM观察超微结构,实现荧光信号与电镜形貌的精确关联。
4. Protargol浸银法——针对神经退行性病变区域
Protargol(蛋白银)浸银法是一种经典的神经组织染色方法,可用于半薄切片的定位染色。将0.5 μm厚的塑料包埋半薄切片在0.5%
Protargol溶液中56℃浸渍24小时,再用亚硫酸钠-氢醌显影液还原,发生Wallerian退变的神经末梢会呈现为清晰可辨的黑色圆点。通过在光镜下识别这些退变区域,可精准引导后续超薄切片的切割位置,确保电镜观察到z高频率的末梢退变结构。
三、标准操作流程
以环氧树脂包埋组织为例,半薄切片定位染色的完整操作流程如下:
第一步:修块与半薄切片
将聚合好的树脂包埋块用刀片修整成梯形或金字塔形,使目标组织位于顶端。使用玻璃刀或金刚石组织刀在超薄切片机上切出0.4~0.5
μm厚的连续半薄切片。
第二步:贴片与干燥
用尖端熔封的巴斯德玻璃吸管将半薄切片从水槽中捞起,贴附于载玻片上,置于热板上烘干至水分完全蒸发。
第三步:染色
根据目标结构选择合适的染色方案(如甲苯胺蓝/碱性品红双染),在热板上进行快速染色(每种染料约10秒),水洗后干燥。
第四步:光镜观察与定位
在光学显微镜10×~40×下观察半薄切片,利用易于辨认的解剖标志(如嗅 pit、眼球、灰白质边界等)确定目标区域的精确位置和取向。
第五步:调整切割方向并切超薄片
根据光镜定位结果,调整树脂块在切片机上的角度,换用金刚石刀切出~70
nm的超薄切片,捞至铜网上,进行醋酸铀/柠檬酸铅电子染色后送TEM或SEM观察。
四、典型应用场景
1. 神经科学研究
在脑组织电镜研究中,半薄切片定位染色是标准操作。研究者利用嗅
pit、眼球、灰白质边界等易于辨认的解剖结构作为参照,在光镜下确认目标脑区(如特定核团、皮层层级)的位置后,再精确切割超薄片。这对于斑马鱼幼鱼脑损伤的大规模STEM成像研究尤为重要——需要在大量组织中快速定位损伤区域。
2. 病理诊断与病变区域筛选
在肾脏活检、肿瘤组织等临床病理样品的电镜诊断中,半薄切片定位染色可快速筛查病变区域(如肾小球基底膜增厚、肿瘤细胞浸润边界),避免在正常区域浪费超薄切片。
3. 关联光学-电子显微镜(CLEM)
半薄切片是CLEM工作流的核心环节。在同一半薄切片上,可先进行免疫荧光染色定位荧光标记的蛋白,再用电子染色观察超微结构,实现同一位置的荧光-电镜关联成像。LR
White等亲水性树脂因其良好的免疫标记兼容性和电子稳定性,是CLEM半薄切片的首选包埋介质。
4. 原位杂交定位
在Lowicryl
K4M等低温包埋树脂的半薄切片上,可进行非放射性原位杂交(ISH),用生物素标记的探针检测特定基因转录本的空间分布,再通过抗生物素抗体-蛋白A-金颗粒-银增强系统实现信号放大,在光镜和电镜两个层级上同时验证杂交信号的组织定位。
五、关键注意事项
半薄切片定位染色的核心要求是"不破坏后续电镜观察的可能性"。因此,染色试剂不能对树脂块表面造成不可逆污染或损伤。甲苯胺蓝和碱性品红等水溶性染料染色时间短、易洗脱,对后续超薄切片质量影响极小。此外,半薄切片的厚度控制至关重要——过厚(>1
μm)会导致光镜下结构模糊、定位精度下降;过薄(<0.3 μm)则染色信号太弱,难以辨认。0.4~0.5 μm是经过大量实践验证的z佳厚度范围。
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