抗原-抗体亲和力(Affinity)是衡量两者结合强度的核心参数,通常用平衡解离常数(KD) 表示:
KD = koff / kon(单位:M),KD 越小,亲和力越高(如 1 nM 比 1 μM 亲和力高 1000 倍)。
各方法详解与操作要点
1. SPR(金标准)
固定策略:
抗体固定(常用 Protein A/G 芯片)→ 注入抗原(避免抗原失活)
或抗原固定(胺偶联/标签捕获)→ 注入抗体
关键参数:
流速:30–100 μL/min
再生条件:筛选温和再生液(如 10 mM Glycine pH 1.5–3.0)
优势:实时、无标记、高灵敏度、可测弱/强亲和力
案例:单抗 KD = 0.5 nM,kon = 2×10⁵ M⁻¹s⁻¹,koff = 1×10⁻⁴ s⁻¹(半衰期 t1/2 ≈ 2 小时)
2. BLI(操作简便,适合粗样品)
传感器 tip 类型:
Protein A:直接捕获 IgG 抗体(Fc 段)
Streptavidin (SA):固定生物素化抗原
步骤:
基线(缓冲液)
负载(固定抗体)
基线2
结合(注入抗原)
解离(缓冲液)
优势:无需微流控,可测细胞裂解液、血清
3. ITC(唯一提供完整热力学信息)
原理:每次滴定抗原到抗体溶液中,测量放热/吸热
输出:KD、ΔH(焓变)、ΔS(熵变)、化学计量比(n)
要求:
抗体浓度 ≈ 10–100 × KD
缓冲液匹配(避免稀释热干扰)
局限:样品消耗大,不适合 KD < 10 nM 或 >100 μM
4. ELISA(间接法,适合初筛)
操作:
包被抗原于板底
加梯度稀释抗体
酶标二抗 + 显色
拟合 OD vs [Ab] 曲线 → 计算 EC50(非真实 KD,但可比较相对亲和力)
注意:EC50 受包被效率、价态影响,不能替代 KD
5. MST(超低样品消耗)
标记建议:荧光标记小分子抗原(避免标记大分子抗体影响结合)
缓冲液灵活:可含 10% 血清、DMSO(适合药物筛选)
适用:膜蛋白、难溶蛋白、弱相互作用(KD 达 mM 级)
来源:网络