流程详解与关键技巧:
第一阶段:样本获取与固定(关键!)
麻醉与取材:采用符合伦理的麻醉方式(如吸入异氟烷)。打开腹腔后,迅速取出肝脏。用锋利的刀片切成 < 0.5
cm厚的组织块(太厚固定不彻底)。
立即固定:立即浸入足量(体积为组织10倍以上)的 4%中性缓冲多聚甲醛 中。这是防止组织自溶和变形的z关键一步。
固定时间:室温下固定 24-48小时。时间不足会导致固定不佳;时间过长会使组织变脆。
第二阶段:脱水、透明、浸蜡与包埋
此步骤目的是用石蜡支持组织,以便切成薄片。
脱水:通过梯度酒精(70% → 80% → 95% → 100% I → 100% II)逐步去除组织中的水分。
透明:用二甲苯替代酒精,使组织透明。
浸蜡:在熔化的石蜡中浸渍,使石蜡充分渗透组织。
包埋:将组织块置于包埋盒中,倒入液态石蜡,冷却后形成蜡块。
第三阶段:切片、展片与烤片
切片:用石蜡切片机将蜡块切成 4-6 μm 厚的连续薄片。
展片:将切片漂浮在40-45°C的温水中展开,再用载玻片捞起。
烤片:将载玻片置于60°C烘箱中烘烤 30-60分钟,使切片牢固粘附。
第四阶段:HE染色(核心步骤)
脱蜡至水:将切片依次浸入:二甲苯I(10分钟)→ 二甲苯II(10分钟)→ 100%酒精I → 100%酒精II → 95% → 80% →
70%酒精(各3-5分钟)→ 蒸馏水。目的是去除石蜡并水化。
苏木精染色:浸入哈里斯苏木精染液中,染色 3-8分钟(时间随染液新旧调整)。细胞核被染成深蓝色。
分化:浸入 1%盐酸酒精(70%酒精配制)中
数秒。此步骤是关键,目的是洗去细胞质等非核结构上过染的苏木精,使核的染色更清晰。镜下控制至核蓝紫色,背景基本无色。
返蓝:用流水冲洗15-30分钟,或浸入弱碱性水(如0.1%氨水)中数秒,使细胞核的蓝色更鲜亮、稳定。
伊红复染:浸入0.5-1%伊红Y水溶液(或酒精溶液) 中,染色 1-3分钟。细胞质被染成粉红色。
脱水、透明、封片:
快速梯度脱水:80% → 95% → 100% I → 100% II酒精(各数秒至1分钟)。
透明:二甲苯I → 二甲苯II(各2-5分钟)。
封片:从二甲苯中取出,稍晾干(勿完全干),滴加一滴中性树胶,盖上盖玻片封存。
第五阶段:镜检与结果分析
待封片剂凝固后,在光学显微镜下观察。
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