在药物研发、蛋白功能研究、分子机制解析等领域,精准量化生物分子间的相互作用是环节。SPR(表面等离子共振)、BLI(生物膜干涉)、ITC(等温滴定量热法)、MST(微量热泳动)是目前应用广泛的四类无/微标记分子互作检测技术,分别对应动力学表征、快速筛选、热力学解析、微量样本检测等差异化场景。下面从原理、优劣势、适用边界三个维度展开对比分析。
一、四大技术原理与优劣势拆解
1. SPR(表面等离子共振):分子互作动力学检测的“金标准”
核心原理:将配体固定在金膜传感芯片表面,分析物以溶液形式流经芯片,两者结合会改变芯片表面折射率,引发SPR共振角偏移,仪器实时记录偏移信号生成传感图,可直接拟合得到结合速率常数(ka/kon)、解离速率常数(kd/koff)、平衡解离常数(KD)等完整动力学参数。
优势
是ICH、中国药典、USP明确认可的分子互作金标准方法,数据可直接用于IND/BLA申报;
动力学检测精度z高,灵敏度可达pM级,亲和力检测范围覆盖pM-mM;
无需标记,可真实反映分子天然结合状态,支持小分子、蛋白、核酸、纳米颗粒等多种类型样本检测。
局限性
配体需固定在芯片表面,可能存在空间位阻或构象改变,影响结合活性;
对样品纯度要求高,粗样(血清、裂解液)中的杂质易引起非特异性吸附,干扰信号;
设备采购成本高(主流机型超百万),微流路系统需定期维护,耗材成本较高。
2. BLI(生物膜干涉):高通量粗样检测的“效率利器”
核心原理:采用一次性光纤生物传感器,配体固定在探针尖端,通过“浸入-读取”模式直接接触样本,分子结合会导致探针表面生物层厚度增加,引发反射白光干涉光谱位移,实时监测位移变化即可获得动力学数据。
优势
无微流路系统,操作简便,维护成本低,耗材价格仅为SPR的1/3-1/2;
不受样本折光率变化影响,可直接检测血清、细胞裂解液、培养上清等粗制样本,无需纯化;
支持96/384孔板并行检测,通量高,样本可完整回收用于下游实验,适合大规模初筛。
局限性
动力学参数检测精度略低于SPR,灵敏度稍弱,小分子(<150Da)检测限较差;
配体同样需要固定,存在空间位阻风险,不适合超高亲和力(pM以下)互作检测。
3. ITC(等温滴定量热法):热力学机制解析的“唯一解”
核心原理:在恒温条件下,将配体溶液逐滴滴入含大分子的样品池,直接检测每次滴定产生的吸热/放热信号,通过拟合热量-摩尔比曲线,可一次性获得KD、结合化学计量比(n)、焓变(ΔH)、熵变(ΔS)、吉布斯自由能变(ΔG)等全套热力学参数。
优势
唯一可直接、全面获取热力学参数的方法,能判断结合是焓驱动(氢键/范德华力主导)还是熵驱动(疏水作用主导),为理性药物设计提供核心依据;
溶液相检测,无需标记、无需固定,不存在表面固定带来的构象干扰,假阳性率极低;
可直接获得结合计量比,适合研究多价结合、协同结合等复杂互作模式。
局限性
样品消耗量大,通常需要300μg以上蛋白,且对样本浓度要求高;
通量低,单次实验耗时长(2-4小时),无法检测结合动力学参数;
弱放热/极弱互作(KD>100μM)检测精度差,缓冲液需严格匹配以避免稀释热干扰。
4. MST(微量热泳动):珍贵样本/膜蛋白检测的“微量专家”
核心原理:利用红外激光在毛细管内产生局部温度梯度,荧光标记的分子在温度梯度中会发生定向迁移,分子结合后质量、电荷、水合层变化会导致迁移速率改变,通过检测荧光信号变化即可拟合KD值。
优势
样品消耗极低,仅需nL级样本、nM浓度即可完成检测,适合珍贵蛋白、难纯化样本;
溶液相检测,无需固定,兼容膜蛋白、细胞裂解液、含去垢剂/高浓度DMSO的复杂缓冲体系;
不受分子量限制,可检测离子、小分子片段与大分子的互作,单次检测仅需20分钟,效率极高。
局限性
需要对待测分子进行荧光标记,可能干扰结合活性,高背景荧光样本(如血清)检测受限;
主要输出亲和力KD数据,动力学参数检测能力有限;
温度敏感体系(如热不稳定蛋白)不适用,目前尚未被药典收录,注册申报中仅作为辅助证据。
二、四大技术横向对比

三、技术选型建议
IND/BLA申报、生物类似药相似性研究、精确动力学表征:首选SPR,必要时用BLI做正交验证;
抗体克隆初筛、粗样结合活性检测、高通量筛选:首选BLI,成本效率z优;
先导化合物优化、结合机制解析、计量比确认:首选ITC,获取热力学指导数据;
珍贵样本、膜蛋白、难纯化蛋白互作检测:首选MST,微量样本即可满足检测需求。
来源:网络