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蛋白质免疫印迹(Western Blot)实验原理

更新时间:2025-10-09 所属栏目:行业信息

  蛋白质免疫印迹(Western Blot, WB)通过SDS-PAGE电泳分离蛋白质,依据分子量差异将混合蛋白转移到固相载体(如PVDF膜或硝酸纤维素膜)上,利用抗体特异性结合目标蛋白,并通过标记二抗显色检测目标蛋白的存在及表达量‌。其核心步骤包括:

  ‌电泳分离‌:SDS使蛋白质变性并均匀负电荷化,电泳迁移率仅取决于分子量。

  ‌转膜‌:将凝胶中的蛋白转移至膜上,保持抗原活性。

  ‌免疫检测‌:一抗结合目标蛋白,二抗标记酶或荧光团,通过化学发光或显色反应可视化‌。

  实验步骤详解

  1. ‌样本制备‌

  ‌细胞/组织处理‌:裂解液(如RIPA)提取蛋白,加入蛋白酶抑制剂防止降解。

  ‌定量‌:BCA法测定蛋白浓度,确保上样量一致。

  2. ‌SDS-PAGE电泳‌

  ‌凝胶配置‌:分离胶(10%)和浓缩胶(4%)按需配制或使用预制胶。

  ‌电泳参数‌:浓缩胶80V,分离胶120V,直至染料前沿跑出凝胶。

  3. ‌转膜与封闭‌

  ‌转膜‌:湿转或半干转法将蛋白转移至PVDF膜(需甲醇活化)或NC膜。

  ‌封闭‌:5%脱脂奶粉或BSA封闭非特异性结合位点,降低背景‌。

  4. ‌抗体杂交与检测‌

  ‌一抗孵育‌:特异性结合目标蛋白,4℃过夜或室温1-2小时。

  ‌二抗孵育‌:酶标二抗(如HRP标记)结合一抗,TBST洗膜去除非特异性结合‌。

  ‌显影‌:化学发光(ECL)或底物显色,通过成像系统分析条带。

       来源:网络

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