外泌体(Exosomes)是直径约30-150
nm的细胞外囊泡,携带蛋白质、核酸等生物活性分子,其浓度测定是研究外泌体功能、疾病标志物筛选及药物递送系统开发的关键步骤。以下是常用测定方法及其技术要点:
一、常用测定方法
1. 纳米颗粒追踪分析(NTA, Nanoparticle Tracking Analysis)
原理:通过激光散射和动态光散射追踪颗粒布朗运动,计算粒径分布与浓度。
步骤:
外泌体样本用PBS稀释至合适浓度(通常10⁷~10⁹ particles/mL)。
注入NTA样品池,调整激光强度和摄像参数。
软件自动分析颗粒运动轨迹,生成浓度(particles/mL)和粒径分布图。
优点:直接测定颗粒数,无需标记,可区分外泌体与其他颗粒。
缺点:设备昂贵,高浓度样本需稀释,易受杂质(如蛋白质聚集体)干扰。
2. 可调电阻脉冲传感(qNano/TRPS, Tunable Resistive Pulse Sensing)
原理:颗粒通过纳米孔时引起电阻变化,根据脉冲信号计算浓度和粒径。
步骤:
选择合适孔径的纳米孔膜(如NP100对应100 nm孔径)。
校准仪器后注入样本,调整压力使颗粒逐个通过纳米孔。
分析脉冲信号强度与频率,获得浓度数据。
优点:高分辨率(单颗粒水平),可检测宽浓度范围(10⁶~10¹² particles/mL)。
缺点:需频繁校准,纳米孔易堵塞,样本需严格纯化。
3. 蛋白质定量法(BCA/Bradford法)
原理:通过测定外泌体总蛋白含量间接反映浓度。
步骤:
裂解外泌体(如用RIPA缓冲液)。
BCA或Bradford试剂与蛋白反应,比色法测定吸光度(562 nm或595 nm)。
根据标准曲线(常用BSA)计算总蛋白浓度。
优点:操作简单,成本低。
缺点:受样本纯度影响大(如游离蛋白污染),无法区分外泌体与其他囊泡。
4. 流式细胞术(Flow Cytometry)
原理:用荧光标记外泌体表面标志物(如CD63、CD9),通过流式细胞仪检测信号。
步骤:
外泌体与荧光抗体(如PE-CD63)孵育。
使用高灵敏度流式细胞仪(如Apogee A50)检测荧光信号。
通过微球标准品定量浓度。
优点:特异性高,可多标志物分析。
缺点:灵敏度受限(需高表达标志物),设备需特殊配置(如小颗粒检测模块)。
5. ELISA法
原理:通过夹心法检测外泌体特异性蛋白(如TSG101)含量。
步骤:
包被捕获抗体(如抗-CD81)于酶标板。
加入外泌体样本,孵育后洗涤。
加入检测抗体(如生物素化抗-TSG101)和酶标链霉亲和素,显色后测定吸光度。
优点:高特异性,适合临床样本。
缺点:仅反映蛋白含量,需已知标志物,无法直接测定颗粒数。
二、实验关键注意事项
1. 样本预处理
纯化要求:
避免杂质干扰:超速离心(100,000×g,2小时)或密度梯度离心去除细胞碎片、蛋白质聚集体。
验证纯度:透射电镜(TEM)观察形态,Western blot检测标志蛋白(如Alix、HSP70)。
保存条件:
短期保存:4℃(不超过48小时);长期保存:-80℃(避免反复冻融)。
2. 方法选择依据
研究目的:
颗粒数测定:优先NTA或qNano。
蛋白标志物分析:选流式或ELISA。
样本类型:
高纯度样本(如细胞上清):NTA、qNano。
复杂体液(如血浆、尿液):需结合纯化步骤,推荐ELISA或BCA法。
3. 数据校正与标准化
内标使用:
添加已知浓度的荧光微球(如100 nm聚苯乙烯颗粒)校正仪器误差。
跨平台验证:
联合两种方法(如NTA+BCA)提高结果可靠性。
4. 常见误差来源
外泌体聚集:超声处理(冰浴,10-30秒)分散颗粒。
背景噪音:空白对照(如PBS)扣除非特异性信号。
仪器波动:定期校准设备,控制室温(避免温度漂移)。
三、前沿技术拓展
微流控芯片:集成分离与检测,实现单外泌体分析(如ExoView平台)。
表面等离子体共振(SPR):实时监测外泌体结合事件,动态分析浓度变化。
数字PCR(dPCR):通过外泌体携带的核酸(如miRNA)拷贝数定量浓度。
四、应用场景
基础研究:外泌体分泌机制、细胞间通讯。
临床诊断:癌症、神经退行性疾病的外泌体标志物筛查。
药物开发:外泌体载药系统的载药量与释放效率评估。
外泌体浓度测定需根据实验目的、样本类型及设备条件选择合适方法,并严格把控样本纯化和操作标准化。多方法联合验证可显著提升数据可信度,为后续功能研究奠定基础。
来源:网络